安全性高，无致突变性：GelRed独特的油性和大分子量特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内，从根本上降低了操作风险。艾姆斯氏试验（Ames test）结果证实，GelRed在远高于凝胶染色使用的工作浓度下均未表现出细胞毒性或诱变性。其水溶染色剂通过美国环保局安全认定，废弃物无需特殊处理可直接倒入下水道。
灵敏度高：GelRed的检测灵敏度比EB高8–10倍，尤其对小分子量DNA的检测具有极高灵敏度。可清晰检测低至1 ng的DNA条带。适用于各种大小片段的电泳染色，对核酸迁移的影响小于SYBR Green I，确保条带位置准确可靠。
稳定性好：本品耐受性强，可在微波炉或其他加热方式下直接加入高温琼脂糖凝胶溶液中，在室温酸性或碱性缓冲液中均保持高度稳定，耐光性能优异，室温避光条件下可长期保存。
操作简便，兼容性强：GelRed与EB用法完全一致，支持预制胶染色（胶染法）和电泳后染色（泡染法）两种方式，均无需脱色。与标准凝胶成像系统完美兼容，可使用标准的EB滤光片或SYBR滤光片观察。染色后的核酸产物不影响下游实验，可顺利用于凝胶纯化、限制性酶切、测序及克隆等后续操作。
| 货号 | 组分 | 规格 | 数量 |
| B60011A | GelRed（10000×） | 0.2 mL | 1 |
15 ~ 25℃避光保存。
GelRed与溴化乙锭（EB）有何区别？
EB和GelRed均可用于核酸电泳染色，但EB为小分子染料（分子量约394），能穿透细胞膜进入细胞，具有强致突变性和致癌性。GelRed为油性大分子染料（分子量约1400），不能穿透细胞膜进入活细胞，艾姆斯氏试验证实其在凝胶染色浓度下无致突变性。两者光谱特性几乎一致，因此用GelRed替代EB时无需更换成像系统。
GelRed有哪几种染色方法？如何选择？
GelRed支持两种染色方式： 胶染法（预制凝胶染色） ：制胶时将GelRed直接加入熔化的琼脂糖中（如每50 mL凝胶加入5 μL 10000×储存液），混匀后制胶，电泳后直接观察。该方法操作简单、染料用量少、更为经济。但GelRed对DNA迁移有一定影响，大量上样时可能出现条带迁移异常。 泡染法（电泳后染色） ：电泳结束后将凝胶浸泡于稀释后的GelRed溶液中（如用0.1M NaCl水溶液按3300:1稀释10000×浓缩液，制成3×工作液），室温震荡染色30分钟左右，无需脱色即可观察。该方法灵敏度更高，能排除染料对DNA迁移的干扰，但染料用量较多，染色液可重复使用2–3次。 建议：常规实验优先选用胶染法；对条带分离度要求较高或上样量较大时，推荐使用泡染法。
GelRed适用于聚丙烯酰胺凝胶（PAGE）吗？
GelRed适用于聚丙烯酰胺凝胶电泳中DNA/RNA的染色，但需采用泡染法。有资料指出PAGE胶的高浓度丙烯酰胺可能影响GelRed的嵌入效率，建议根据具体实验条件进行预试验确认染色效果。
GelRed可以用于单链DNA或RNA染色吗？
可以。GelRed可用于单链DNA和RNA的染色。但GelRed与单链核酸结合后的荧光信号约为双链DNA的一半。对于单链核酸的染色灵敏度，GelRed比GelGreen敏感约5倍。
使用胶染法时出现条带迁移异常或“微笑”条带，如何改善？
可能原因及解决方案如下： DNA上样量过大：推荐上样量为50–200 ng/泳道，对于未知浓度样品可尝试减少至常用量的1/2或1/3。 GelRed浓度过高：尝试使用0.5×工作浓度替代1×。 凝胶浓度不适宜：高分子量DNA建议使用低百分比琼脂糖凝胶。 电泳缓冲液不匹配：TBE缓冲液通常比TAE缓冲液分离效果更好。 改用泡染法：如上述调整无效，建议改用泡染法以避免染料对DNA迁移的干扰。
GelRed预制凝胶可以提前制备保存吗？
可以。GelRed染料在琼脂糖凝胶中稳定，可提前制备预制凝胶并在4℃避光保存备用。但电泳后的凝胶不建议重复使用，因为连续电泳会降低染色强度。
