本产品是一种用于SDS-PAGE（十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳）蛋白样品制备的2×浓缩型上样缓冲液。配方中含示踪染料溴酚蓝，可用于实时监测电泳进程。使用时与蛋白样品混合至1×工作浓度，95℃以上水浴10min即可完成对样品变性处理，在凝胶电泳中可实现良好的组分分离，配合考马斯亮蓝染色或银染等显色方法，蛋白条带可清晰显影。
| 货号 | 组分 | 规格 | 数量 |
| B16031A | SDS-PAGE Loading Buffer(2×) | 1 mL | 5 |
-20℃。
上样缓冲液出现沉淀是什么原因？如何处理？
SDS在低温下容易析出形成沉淀。使用前将缓冲液在室温或不超过37℃的水浴中加热溶解，直至沉淀完全消失，然后立即室温存放。避免长时间置于高温环境中。
使用比例和加热条件是什么？
按蛋白样品:上样缓冲液 = 4:1的比例混合（即每4 μL蛋白样品加入1 μL 5×上样缓冲液），充分混匀。于100℃沸水浴加热3–5分钟使蛋白充分变性。建议95℃加热5分钟，温度过高（如100℃）或时间过长（如超过15分钟）可能导致蛋白降解或指示剂颜色异常。
加热后样品仍然粘稠怎么办？
如细胞或组织用量较大、基因组DNA含量较高，煮沸后可能仍较粘稠或有半透明凝胶状物。可延长煮沸时间5–10分钟，或加入适量稀释成1×的上样缓冲液后再煮沸3–5分钟，使基因组DNA断裂、蛋白充分释放。也可使用超声或1 mL注射器反复抽吸打断基因组DNA。
上样缓冲液是否适用于非变性PAGE？
不适用。本产品含有SDS变性剂，仅适用于SDS-PAGE变性凝胶电泳，不适用于非变性凝胶电泳（Native-PAGE）。
5×上样缓冲液与2×上样缓冲液有何不同？
主要区别在于浓缩倍数和稀释比例。5×需按1:4稀释至1×使用；2×则按1:1稀释。两者成分和作用原理相同，可根据实验习惯和样品量选择。
